Взятие крови у КРС из подхвостовой вены и яремной

Содержание
  1. Взятие крови у крс из хвостовой вены
  2. Системы вакуумного забора венозной крови имеют преимущества, более чем достаточные для того, чтобы навсегда забыть о прежней методике взятия крови
  3. Преимущества вакуумных систем в сравнении с обычными иглами и пробирками:
  4. Преимущества методики забора крови с использованием вакуумных систем:
  5. ЗАО «Фирма «Домен» предлагает вакуумные системы Venosafe TERUMO (производство Бельгия) и Bodywin (производство Китай)
  6. Взятие крови у коров из хвостовой вены и яремной
  7. Сколько групп крови у разных животных
  8. Из яремной вены
  9. Из молочной вены
  10. Из хвостовой вены
  11. Самая универсальная группа у собак
  12. Для чего нужны биохимические исследования крови у КРС?
  13. Правила и 3 техники взятия крови у КРС, подготовка и возможные ошибки
  14. Подготовка животного
  15. Техника взятия крови у КРС
  16. Особенности вакуумного забора крови
  17. Возможные ошибки
  18. Подготовка к забору крови у КРС
  19. Методы взятия крови у коров
  20. Взятие крови у коров из хвостовой вены
  21. Взятие крови у КРС из яремной вены
  22. Особенности взятия крови у коров и свиней
  23. Нюансы отбора материала
  24. Моменты, учитываемые при выборе места отбора крови:
  25. Взятие крови у коровы
  26. Техника отбора крови из хвостовой вены:
  27. Взятие крови у свиней
  28. Тип крови

Взятие крови у крс из хвостовой вены

Взятие крови у КРС из подхвостовой вены и яремной

ЗАО «Фирма «Домен», г. Санкт-Петербург:
Тел.: +7(812)327-75-85; E-mail: fdomen@domen.sp.ru

В последние годы ветеринары проявляют всё больший интерес к современной методике забора крови у сельскохозяйственных животных с использованием систем вакуумного забора крови. Однако, не всем специалистам удалось из первых рук получить достоверную информацию об особенностях и преимуществах новой методики и ознакомиться с ней на практике.

До сегодняшнего дня широко распространённым способом забора крови у животных (в частности КРС) остаётся взятие её из ярёмной вены либо из хвостовой вены, но также, как и из ярёмной, с использованием кровопускательных (или инъекционных) игл и стеклянных пробирок (не вакуумных). Но данная методика имеет ряд серьёзных недостатков:

  1. Кровь набирается через кровопускательную иглу самотёком в открытую пробирку. Это очень часто приводит к разбрызгиванию крови, в связи с чем высок риск инфицирования животных и человека.

    Некоторые используют шприцы, но это не избавляет от необходимости переливать кровь в открытую пробирку.

    Если нужна не сыворотка, которая выделится в стеклянной пробирке (но не в пластиковой), а цельная кровь, то нужно вручную отмерять необходимый для исследований объём крови и затем вручную добавлять нужное количество реагентов (где тоже возможны ошибки в дозировке).

    К тому же, переливание крови из шприца в пробирку зачастую приводит к гемолизу, что искажает результаты исследований или делает их невозможными. Также ошибочным является взятие крови шприцом с последующим переливанием крови в вакуумную пробирку.

  2. Набранная самотёком в открытую пробирку, кровь теряет свою стерильность из-за воздействия на неё внешней среды, следовательно, результаты лабораторных исследований могут быть искажены.

    Стеклянные пробирки закрываются либо нестерильными резиновыми пробками, либо ватными тампонами, что часто приводит к открытию пробирки с разлитием крови.

  3. Стеклянные пробирки часто разбиваются – соответственно, нужно не только ликвидировать последствия этого в виде осколков и разлитой крови, но и повторно брать пробу крови у животного.
  4. При заборе крови из ярёмной вены необходима фиксация животного, то есть привлечение к процедуре дополнительного персонала, с соответствующими затратами труда, нервов, времени и финансов.
  5. Жёсткая фиксация, а также боль при взятии крови толстостенными кровопускательными иглами большого диаметра вызывает стресс у животных. В случае с КРС это приводит к неизбежному снижению надоев молока от 0,3 до 1 л в день в течение нескольких дней. На 1000 голов убытки от падения надоев могут составлять до 20-25 тыс. руб (кстати, одна только эта сумма значительно превышает стоимость вакуумных систем забора крови, необходимых для забора крови у 1000 голов).
  6. Грубая фиксация приводит к массовому перезаражению лейкозом ранее здоровых животных, через травмирование слизистой носовой полости.

Системы вакуумного забора венозной крови имеют преимущества, более чем достаточные для того, чтобы навсегда забыть о прежней методике взятия крови

Состоит вакуумная система из трёх компонентов:

  1. Двусторонняя игла — резьбовая, либо автоматическая (разной длины и диаметра).
  2. Иглодержатель — резьбовой, либо автоматический.
  3. Вакуумная пробирка.
Вакуумная пробиркаИглодержатель резьбовойДвусторонняя игла резьбовая

Пробирка стерильна, герметична, изготовлена из небьющегося биологически инертного пластика (полиэтилентерефталат), не влияющего на результаты исследований.

Пробирки содержат реагент, распылённый по стенкам:

  • для получения сыворотки используется активатор свёртывания (кремниевое напыление, активирующее образование сгустка крови и выделение сыворотки);
  • для получения цельной крови используется антикоагулянт К2 ЭДТА (Трилон Б).

В пробирку не надо вручную добавлять реагенты – после забора крови вакуумную пробирку (как с крышкой, так и без неё) можно центрифугировать и помещать в анализатор.

Пробирки могут быть с разным объёмом вакуума (следовательно, и объёмом забираемой крови) – от 2 до 10 мл.

Самые востребованные объёмы – 9-10 мл (для КРС, свиней, лошадей). Для мелких животных можно использовать пробирки на 2, 3, 4 мл.

Преимущества вакуумных систем в сравнении с обычными иглами и пробирками:

1. Двусторонние иглы с лазерной заточкой среза легко входят в вену, не вызывая сильных болезненных ощущений.

Если кровопускательные или инъекционные иглы применяются диаметром 1,2 мм (18G), то двусторонние иглы вакуумных систем можно использовать диаметром 0,9 мм (20G) – так как эти иглы тонкостенные, то при меньшем внешнем диаметре иглы, её внутренний диаметр не уступает в пропускной способности иглам с толщиной 1,2 мм.

Внешняя и внутренняя поверхности иглы обработаны силиконом, поэтому кровь свободно течёт в пробирку, не вызывая тромбирования иглы. Резиновый клапан на дистальном конце иглы предотвращает разбрызгивание крови в момент нахождения иглы в вене при отсутствии пробирки.

Благодаря этому, можно набрать кровь в несколько пробирок, не вынимая иглы из вены — одна пробирка вынимается из иглодержателя, и вставляется другая пробирка для забора новой пробы крови (если необходимо взять кровь сразу на несколько видов исследований).

2. Сохраняется герметичность системы во время взятия пробы, кровь остаётся стерильной и не разбрызгивается, что исключает возможность перекрёстного инфицирования.

3. Вакуумная пробирка сделана из небьющегося материала. Не нужно собирать осколки стеклянных пробирок и убирать разлитую кровь (возможно инфицированную).

4. Сокращается время свёртывания крови в пробирке. Благодаря активатору свёртывания (кремниевое напыление) сыворотка выделяется за 20-30 мин.

5. Проба крови набирается в вакуумную пробирку, в ней же транспортируется в лабораторию, в ней же центрифугируется и в ней же исследуется в анализаторе. То есть, отпадает необходимость переливания крови из одной пробирки в другую.

Вакуумная пробиркаИглодержатель автоматическийДвусторонняя игла автоматическая

Преимущества методики забора крови с использованием вакуумных систем:

1. Кровь берётся из хвостовой вены КРС одним специалистом без фиксации животного. Это наиболее простой и эффективный способ, хотя можно брать кровь и из других вен.

2. Отсутствие стресса у коровы исключает снижение надоев молока, что позволяет экономить значительные средства. Снижается или полностью отсутствует травмирование ветеринаров из-за ударов животных.

3. На взятие крови у одной коровы, включая подготовку вакуумной системы, затрачивается около 30 секунд. Таким образом, ветеринарный врач может за один день самостоятельно, без помощников, взять пробы крови у стада КРС в 300-500 голов. Снижение времени пребывания ветработников в местах расположения животных позволяет последним спокойно принимать корм и отдыхать между дойками.

При взятии крови двусторонняя игла закрепляется в иглодержателе, вводится в вену, затем вакуумная пробирка вводится в иглодержатель таким образом, что дистальный конец иглы проходит сквозь мембрану крышки, и кровь, под воздействием вакуума, сама заполняет пробирку.

После наполнения кровью пробирка вынимается из иглодержателя, а иглодержатель с иглой извлекается из вены. Игла утилизируется. Пробирка аккуратно переворачивается 2-3 раза (для лучшего смешивания крови и реагента) и ставится в штатив, уже готовая к транспортировке в лабораторию, центрифугированию и исследованию в анализаторе.

ЗАО «Фирма «Домен» предлагает вакуумные системы Venosafe TERUMO (производство Бельгия) и Bodywin (производство Китай)

Между различными системами забора крови (в том числе, поставляемыми в Россию другими компаниями) принципиальных отличий нет.

Однако, TERUMO (Бельгия) является единственным в мире производителем, который выпускает двусторонние иглы для вакуумных систем не только с резьбовым соединением с иглодержателем, но и с автоматическим (безрезьбовым).

Эта отличительная особенность высоко оценена ветврачами, сталкивающимися с необходимостью забора крови сразу у нескольких десятков или сотен животных за один день силами одного или двух человек.

При использовании резьбовых игл необходимо учитывать дополнительные затраты времени и сил персонала для того, чтобы извлечь резьбовую иглу из иглодержателя, не нарушая технику безопасности, нужен специальный контейнер для утилизации игл, оснащённый разъёмом в крышке, куда вставляется игла и поворотом держателя выкручивается и падает в контейнер. Такие контейнеры достаточно дорогие и их мало кто применяет. Поэтому, специалисты вынуждены извлекать использованную резьбовую иглу из иглодержателя, надевая на неё защитный колпачок и вручную выкручивая и выкидывая в какую-нибудь тару. Если речь идёт о заборе крови у пары десятков голов, то особых проблем это не вызывает, если нарушение техники безопасности при таких манипуляциях для кого-то не является проблемой. Но при заборе крови у нескольких десятков или сотен голов (особенно немолодыми ветеринарами) возникает не только значительная потеря времени на вкручивание-выкручивание игл, но и перенапряжение рук (сухожилий). Кроме того, что самое неприятное и опасное, очень высока вероятность травмирования потенциально инфицированной использованной иглой при очередном надевании на неё колпачка для последующего выкручивания из иглодержателя. Поэтому, использование автоматических игл и иглодержателей на практике выгоднее и безопаснее, чем резьбовых, несмотря на то, что автоматические чуть дороже.

Стоят автоматические иглы лишь на 50 копеек дороже резьбовых (производства TERUMO).

Разница в цене автоматических и резьбовых иглодержателей на первый взгляд достаточно велика, но она становится совершенно несущественной при пересчёте стоимости держателя на одну процедуру забора крови — автоматические иглодержатели с механизмом сброса иглы можно использовать до 500 раз, подвергая соответствующей обработке после каждого использования. То есть, себестоимость иглодержателя в пересчёте на 1 забор крови = 3-5 копеек.

Использовать автоматические (безрезьбовые) иглы и иглодержатели очень легко. Игла просто защёлкивается в держатель, а после использования, нажатием 2-х кнопок, сбрасывается в любой контейнер для утилизации игл (даже неспециализированный).

Тут же в иглодержатель можно защёлкивать новую иглу, и так же быстро сбросить после очередного использования. Иглодержатель, при правильном использовании, не контактирует с кровью, поэтому на практике он не может быть звеном передачи инфекции.

Но, для соблюдения санитарных норм, каждый иглодержатель после использования должен быть подвергнут соответствующей обработке для дезинфекции.

Кроме наличия автоматических игл и иглодержателей, преимуществом ЗАО «Фирма «Домен», как поставщика вакуумных систем, является то, что в нашем ассортименте всегда имеются в наличии не только двусторонние иглы длиной полтора дюйма (1 1/2″ = 38-40 мм), но и длиной 1 дюйм (1″ = 25 мм). При заборе крови из ярёмной вены КРС и свиней используются иглы длиной 40 мм, а при заборе крови из хвостовой вены КРС можно применять иглы и на 40 мм, но гораздо удобнее на 25 мм.

Автоматические иглы и иглодержатели Терумо (Бельгия) можно использовать вместе с пробирками других производителей — они все сделаны по единым стандартам — поэтому, при необходимости экономии средств, можно к ним закупать пробирки Бодивин (Китай).

ЗАО «Фирма «Домен» с 2000 года осуществляет прямые поставки в Россию данной продукции.

Товар, постоянно имеющийся в наличии на наших складах в Санкт-Петербурге, мы готовы поставить в кратчайшие сроки, как по прямым договорам, так и через систему госзакупок (аукционы, котировки).

Методика забора крови описана в «Сборнике методических указаний по применению вакуумных систем забора крови в ветеринарной практике», выпущенном нашей компанией (высылаем в электронном виде по Вашему запросу).

ЗАО «Фирма «Домен», г. Санкт-Петербург:
Тел.: +7(812)327-75-85; E-mail: fdomen@domen.sp.ru

Источник: https://aquariumfan.ru/antananarivo-32/

Взятие крови у коров из хвостовой вены и яремной

Взятие крови у КРС из подхвостовой вены и яремной

Анализ проводится для того, чтобы выявить у животного нарушения обмена веществ, недостаток каких-либо полезных веществ в организме. С помощью этой процедуры можно вовремя заметить развитие лейкоза, определить, каким именно инфекционным заболеванием заразилось животное.

Кровь разносит по организму все полезные вещества, витамины и минералы. От того, насколько правильно и быстро осуществляется кровоток, зависит не только общее состояние животного, но и количество получаемого молока.

Если результат анализа показал нехватку нутриентов, фермер может предпринять определённые действия, такие как изменение рациона, добавление в него витаминных смесей, лекарств и прочего.

Сколько групп крови у разных животных

Учеными давно установлено, что группы крови у животных разные, причем, у различных представителей их количество существенно варьируется. Так, у собак выделяют 11 групп, у кошек – три, у лошадей – 8, у кур – 60, у свиней – 30.

Самыми изученными являются группы крови домашних и сельскохозяйственных животных.

В ветеринарии, данные о группе крови у животных помогают в селекционировании, установлении отцовства, для структурирования породы, а также для проверки животных при экспорте и импорте.

Из яремной вены

Взятие крови из яремной вены является самым распространённым способом. Рекомендуется проводить процедуру рано утром, перед первой кормлением. Чтобы провести анализ нужно привязать голову бурёнки, зафиксировать её в неподвижном состоянии. Далее следует зажать вену в нижней трети шеи, потом вводить иглу под острым углом. Кончик иглы должен быть направлен к голове животного.

Плюсами такого способа являются:

  • животное почти не травмируется;
  • лёгкость произведения операции;
  • быстрота проведения процедуры.

Среди недостатков можно выделить:

  • сильное разбрызгивание крови;
  • появление риска распространения инфекций, которые опасны не только для животных, но и для человека;
  • сложность фиксации коровы в определённом положении;
  • частое возникновение осложнений, которые проявляются в виде абсцессов, гематом;
  • стресс у коровы, который может привести к снижению удоя.

Из молочной вены

Положительными сторонами данного метода являются:

  • доступная цена материалов, необходимых для проведения процедуры;
  • высокая скорость сбора образца;
  • меньшее разбрызгивание, чем при взятии образца из яремной вены.

Минусов у такого способа значительно больше, чем плюсов:

  • высокий риск травмировать животное;
  • контакт с кровью коровы;
  • во время процедуры тёлка испытывает огромный стресс, потому что забор образца проводится в очень нежной зоне, которую животное постоянно оберегает;
  • сложность проведения процедуры.

Данный способ получения образца крови у крупного рогатого скота устарел. Благодаря новым технологиям, методам и оборудованию такую процедуру проводят гораздо быстрее и легче, минимизируя риски для животного.

Из хвостовой вены

Из явных положительных сторон этого метода можно выделить:

  • полученный образец стерилен;
  • риск образования сгустков в пробирке значительно снижен;
  • не требуется фиксировать животное;
  • очень высокая скорость проведения процедуры. Один ветеринар может за час взять до двух сотен образцов;
  • крайне малый шанс возникновения побочных эффектов или травм у коровы;
  • исключение непосредственного контакта с кровью;
  • корова не испытывает стресса и привычный удой сохраняется.

Минусами упомянутого способа забора крови являются:

  • более высокая стоимость оборудования;
  • низкая популярность упомянутого метода.

Самая универсальная группа у собак

Одной из самых важных считается кровь DEA1.1. Сведения о группе обязательно включаются в ветпаспорт.

Группы крови животных и человека разные, но обе характеризуются резус-фактором. У животных он так же может быть положительным и отрицательным. Причем, половина животных имеют DEA1.1 +. Таким собакам можно переливать кровь любой породы, но только с такой же кровью. Те животные, у которых DEA1.1 –, считаются универсальными донорами.

При первом переливания кровь собак с группой DEA1.1+ можно перелить животным, которых кровь DEA1.1 –. Первое переливание проходит успешно. После него в организме накапливают антитела и при повторном переливании, возникает иммунная реакция с тяжелыми последствиями.

Перед переливанием крови любой группы обязательно проводят тест на совместимость, во время которого проверяют наличие антигенов.

Кровь у собак не имеет связанных с породами различий. Так, кровь от спаниеля можно переливать мопсу, терьеру и другим породам, главное, чтобы она была совместима.

Для чего нужны биохимические исследования крови у КРС?

Приветствую всех посетителей блога. Предлагаю вернуться к основам кормления. Что нужно знать для балансировки рациона коровам? Это не только химический анализ кормов, но биохимические показатели крови крс. В ходе исследований можно увидеть реальную картину обмена веществ у животных.

Источник: https://SelSov.ru/soderzhanie-krs/skolko-litrov-krovi-u-korovy-2.html

Правила и 3 техники взятия крови у КРС, подготовка и возможные ошибки

Взятие крови у КРС из подхвостовой вены и яремной

Лечебно-профилактические мероприятия, как неотъемлемая часть ветеринарного надзора в скотоводческой отрасли, требуют пристального внимания и регулярности. Взятие крови на анализ у КРС является важной профилактической процедурой, от техники выполнения которой зависит достоверность исследования, безопасность окружающих и дальнейшая производительность коров.

Подготовка животного

Забор крови у коров проводят для исследования ее биохимического состава, исключения инфекционных заболеваний или подтверждения предполагаемого диагноза. Венозная кровь необходима для проведения анализа на лейкоз, бруцеллез, туберкулез.

Чтобы взять материал у коровы, не причинив вреда здоровью животного, необходимо правильно подготовиться к процедуре. Оптимальное время для забора – утренние часы перед первым кормлением.

После приема пищи не рекомендуется брать кровь на анализ в течение 5 часов.

Место для взятия пробы освобождают от волосяного покрова и, при необходимости, фиксируют скотину, после чего участок обрабатывают антисептиком. Для дезинфекции подходит 70 % раствор этилового спирта, 1 % спиртовой раствор салициловой кислоты, 5 % спиртовой раствор йода.

Методики, не требующие принудительной фиксации положения тела, легче переносятся животными. Стресс от проведенной процедуры может привести к снижению удоя. Не рекомендуется брать кровь у самок за 3 недели до отела и в течение 3 недель после родов.

Чтобы не возникало осложнений, необходимо соблюдать технику взятия крови, выбирая менее травматичный для коровы и безопасный для человека вариант.

Техника взятия крови у КРС

Забор крови у коров проводят из яремной, хвостовой или молочной вен. Работа в каждой зоне имеет свои особенности, обусловленные различным местоположением и скоростью кровотока.

Особенности вакуумного забора крови

Использование современных вакуумных систем для забора крови позволяет проводить процедуру КРС быстро и безопасно. Вакуумный способ хорошо работает на хвостовой вене. Процесс не травмирует корову, исключает прямой контакт человека и других животных с биоматериалом.

Система состоит из иглы и шприца-контейнера. Игла, имеющая оптимальный диаметр (обычно 0,9 миллиметра), снабжена клапаном, который исключает вытекание жидкости, что уменьшает вероятность возможных осложнений. Шприц, одновременно выполняющий функцию транспортного контейнера, сделан из прочного пластика. В нем же можно выделить сыворотку или добавить антикоагулянт.

Достоинства вакуумного метода:

  • отсутствие необходимости фиксации животного;
  • минимизация стрессового фактора для коровы;
  • исключение прямого контакта человека с материалом;
  • получение стерильной пробы;
  • исключение непредвиденного риска распространения инфекции;
  • удобство в использовании без переливаний образца в транспортную тару.

Маркировка вакуум-систем включает удобное на практике цветовое кодирование, что позволяет сортировать взятые пробы.

Возможные ошибки

При выполнении стандартной методики взятия крови из яремной вены велика вероятность попадания материала на человека и окружающие предметы. Если животное заражено, возникает риск распространения инфекции. Открытый способ занимает много времени, требует подготовки и предельной аккуратности.

При нарушении правил асептики и техники забора крови полученный образец может не соответствовать требованиям, у коровы могут возникать осложнения в виде абсцессов, гематом. Не рекомендуется форсировать забор во избежание частичного гемолиза кровяных клеток.

Источник: https://DachaMechty.ru/krs/soderzhani/vzyatie-krovi.html

Подготовка к забору крови у КРС

Как правило, у коров забор крови делают из яремной вены, находящейся в верхней трети шеи. Объем полученного материала для исследования не должен быть меньше 5 мл с антикоагулянтом 0,5 М ЭДТА.

Используемые иглы перед началом процедуры стоит предварительно простерилизовать, используя для этих целей кипячение. Важно учитывать, что забор у каждой коровы нужно осуществлять новой иглой.

Место взятия обязательно дезинфицируют. Для дезинфекции используют спирт или 5% раствор йода. Во время взятия пробы животное должно быть надежно зафиксировано – привязывают голову.

После того как материал для исследования был взят, стоит плотно закрыть пробирку и перевернуть ее несколько раз, чтобы произошло смешивание с антикоагулянтом. При этом не допускается встряхивание. Каждую пробирку нумеруют согласно описи.

Самым эффективным способом является взятие крови из подхвостовой вены. В данном случае корову необязательно фиксировать. Пробирки рекомендуется в дальнейшем хранить при температурном режиме от +4°С до +8°С. Для этих целей отлично подойдет холодильник. Не стоит использовать морозильную камеру. В случае если во взятом образце появились сгустки, к дальнейшему исследованию он непригоден.

Внимание! Не допускается использование гепарина и других видов антикоагулянтов. Для транспортировки заборного материала используют специальные сумки с хладагентом. В процессе транспортировки кровь не должна быть свернута или заморожена.

Методы взятия крови у коров

На сегодняшний день существует несколько методов взятия крови у крупного рогатого скота. Ее берут из таких вен:

  • яремной;
  • молочной;
  • хвостовой вены.

Перед тем как осуществить процедуру, рекомендуется предварительно зафиксировать животное, что исключит травмирование. В таком состоянии корова также не сможет опрокинуть пробирку. Перед процедурой потребуется продезинфицировать место забора крови с использованием раствора фенола, спирта или йода.

Взятие образца из яремной вены является одним из самых популярных способов. Как правило, процедуру проводят рано утром либо до того, как корова получит корм. Для проведения процедуры голову животного привязывают и фиксируют в неподвижном состоянии. Иглу необходимо вводить под острым углом, при этом кончик обязательно направлен к голове.

Из молочной вены допускается делать забор крови для исследования только у взрослой особи. Молочные вены расположены на боковой части вымени и тянутся вниз по брюшной части. Через них происходит снабжение молочных желез кровью и питательными веществами. Стоит отметить, что чем лучше развиты молочные вены, тем больше молока можно получить от коровы.

Безопаснее всего брать образцы для исследований из хвостовой вены. Место укола, так же как и в остальных случаях, необходимо продезинфицировать. Если выбрать место для укола на уровне от 2 до 5 позвонка, то процедура пройдет более гладко.

Взятие крови у коров из хвостовой вены

Как показывает практика, забор крови из хвостовой вены для проведения исследований является самым безопасным вариантом.

Для этих целей можно использовать обычную иглу либо воспользоваться специальной вакуумной системой.

Такие системы уже включают специальные пробирки, в которых содержится антикоагулянт и требуемое давление, что позволяет крови из хвостовой вены вытекать в емкость плавно.

Перед тем как сделать забор образца из хвостовой вены, необходимо с помощью спирта либо йодного раствора продезинфицировать место укола. После этого хвост у коровы приподнимают и удерживают его за среднюю треть. В данном случае иглу необходимо вводить плавно в хвостовую вену, угол наклона должен составлять 90 градусов. Иглу, как правило, вводят до упора.

Такой способ забора имеет большое количество преимуществ:

  • взятый образец полностью стерилен;
  • в пробирке практически не образуются сгустки, в результате чего все образцы пригодны для исследования;
  • для проведения данной процедуры не требуется много времени. Опытный ветеринар на протяжении 60 минут может звать образцы у 200 животных;
  • при использовании такого метода не возникает побочных эффектов, при этом шанс травмирования крупного рогатого скота сводится к минимуму;
  • контакт с кровью минимальный;
  • животное не испытывает стресс, привычный уровень удоя сохраняется.

Такой метод наиболее часто используют на крупных фермерских хозяйствах, где необходимо взять большое количество проб за короткий промежуток времени.

Взятие крови у КРС из яремной вены

В случае если необходимо осуществить забор крови из яремной вены, рекомендуется вставлять иглу на границе, где происходит переход верхней трети шеи в среднюю. Первым делом необходимо вызвать достаточный уровень наполнения вены и минимизировать ее подвижность. Для этих целей рекомендуется сдавить вену при помощи резинового жгута либо пальцев.

Во время прокола потребуется держать в руке шприц с иглой таким образом, чтобы направление иглы совпадало с линией хода прокалываемой вены. Необходимо следить за тем, чтобы срез иглы был направлен вверх, в сторону головы. Иглу стоит вставлять под углом от 20 до 30 градусов. Если игла попала в вену, то из нее начнет вытекать кровь.

Перед тем как извлечь иглу из яремной вены коровы, стоит предварительно снять резиновый жгут, а вену пережать пальцами. Пережимать необходимо чуть выше того места, где находится игла.

Иглу постепенно извлекают, а место укола рекомендуется некоторое время сдавливать ватным тампоном, что позволит предотвратить образование гематом на теле животного.

В завершении процедуры место венепункции дезинфицируют спиртом либо настойкой йода и обрабатывают раствором «Коллодия».

Внимание! В зависимости от поставленной задачи для исследования можно использовать кровь, плазму либо сыворотку.

В данном случае необходимо учитывать, что забор крови из молочной железы можно делать только у взрослых особей. Необходимую вену можно обнаружить сбоку на вымени.

Перед тем как осуществить забор пробы, рекомендуется предварительно зафиксировать животное. Как правило, для проведения процедуры потребуется присутствие нескольких человек. Первым делом необходимо сбрить либо состричь волосяной покров с того места, где планируется делать прокол иглой. После этого подготовленный участок дезинфицируют с использованием спирта либо йодного раствора.

В хорошей видимости должен находиться своеобразный бугорок небольшого размера, куда и рекомендуется вводить иглу. Так как можно довольно легко нанести вред корове, то иглу вводят максимально осторожно. Ее необходимо ввести под углом, параллельно ходу вены, пока игла точно не попадет в нее и не появиться венозная кровь темного цвета.

Такой способ имеет некоторые преимущества:

  • приемлемая стоимость материалов, необходимых для проведения исследований;
  • для сбора образцов не требуется много времени;
  • разбрызгивание крови минимальное.

Несмотря на это, имеются и существенные недостатки:

  • риск нанести корове травму довольно высокий;
  • придется контактировать с кровью животного;
  • во время забора крови животное испытывает сильный стресс, так как иглу вводят в самое нежное место на теле;
  • проводить данную процедуру довольно сложно.

Благодаря новым технологиям данный метод устарел, им практически не пользуются при проведении исследований.

Особенности взятия крови у коров и свиней

Взятие крови у КРС из подхвостовой вены и яремной

Из статьи вы узнаете, как брать кровь у крупного рогатого скота, свиней, хранить и стабилизировать биопробы

В ветеринарных лабораториях уточняется диагноз, определяется эффективность обработок, выявляются скрытые патологические процессы… Первым делом отбирается образец (биопроба).

Речь идет о крови, продуктах жизнедеятельности (моче и кале), секрете молочной железы, поте, содержимом желудка, рубца и кишечника, тканях, кусочках органов. Чаще исследуется кровь. Именно о ней мы сегодня и поговорим.

Вы узнаете, как получают такой материал у разных видов животных, доставляют его в лабораторию.

В силу нестабильности химического состава крови для получения достоверных результатов нужно соблюдать правила отбора и хранения биологического материала.

Нюансы отбора материала

При отборе крови учитывается суточная динамика и соблюдаются правила антисептики. Кровь следует отбирать перед кормлением. Если же животное получило корм, то надо выждать не менее пяти часов.

В крови, отобранной раньше, концентрация белка, глюкозы, липидов, лейкоцитов и др. выше физиологической нормы.

Пример: норматив по глюкозе в сыворотке крови у КРС – от 2,2 до 3,5 ммоль/л, но если отобрать кровь через час после кормления, значение показателя увеличивается как минимум в два раза.

Один из факторов, определяющих концентрацию минералов, эритроцитов, – время суток. По этой причине материал повторно отбирается в одни и те же часы.

В некоторых случаях взятие пробы невозможно без нарушения целостности тканей. В подобных ситуациях обязательна асептика-антисептика. Лучший антисептик – 70-градусный этиловый спирт. Правда, ветеринары пользуются им, когда есть необходимость во введении туберкулина. Также эффективен спирт-эфир. В крайнем случае пользуются 3-процентной карболовой кислотой.

В стране имеется широкий ассортимент антисептических средств для обработки места прокола (для взятия крови или инъекции). Основа львиной части антисептиков представлена этиловым спиртом, используемым вкупе со вспомогательными бактерицидными компонентами, усиливающими действие.

При выборе препарата нужно руководствоваться составом, ценой и удобством применения. Себя зарекомендовали антисептические спиртовые средства, используемые в виде аэрозолей.

Большое значение имеет анализ крови и лекарства. Материал для анализа отбирается до лечебных мероприятий. Но в любом случае берутся в учет лекарства, которые получало животное. Так, по причине внутривенного введения средства иногда уменьшается количество эритроцитов, гемоглобина… Использование вакцины вызывает лейкоцитоз.

Чем быстрее кровь окажется в пробирке, тем меньше вероятность получения искаженных результатов. На билирубине, витамине В2 отрицательно сказывается свет. Поэтому пользуются светонепроницаемыми пакетами.

Допускается временное хранение материала в ящике.

При риске разрушения вещества под влиянием кислорода кровь отбирают в пробирку с вазелиновым маслом: так получаемая сыворотка находится под слоем масла и недоступна для воздуха.

Моменты, учитываемые при выборе места отбора крови:

  • видовая принадлежность животного;
  • размер животного;
  • анатомия сосудов (кровь берется из самых доступных вен);
  • опыт, личные предпочтения специалиста.

Взятие крови у коровы

У КРС кровь берется из яремной, хвостовой и молочной вен.

Отбор пробы из яремной вены – наиболее популярная процедура, но требует определенной сноровки при нахождении места прокола и при фиксации животного. Корове необходимо тщательно фиксировать голову и шею, что сказывается на доступе к яремной вене.

В плане безопасности кровь лучше брать из хвостовой вены. Правда, в этом случае приходится иметь дело с медленным кровотоком. Такая проблема решается посредством так называемых «пробирок с вакуумом», более тщательной очистки места прокола и опыта.

Допустимо использовать «вакуум» шприца: после прокола кожи и сосуда к игле присоединяем шприц (со стабилизатором или без) и набираем кровь. Стоит помнить, что форсированное насасывание крови в шприц может привести к частичному разрушению (гемолизу) клеток крови, что отразится на корректности результатов.

И все же мы рекомендуем практиковать именно этот способ отбора крови.

Техника отбора крови из хвостовой вены:

  1. Животное фиксируют в станке.
  2. Очищают область у корня хвоста.
  3. Иглу берут в одну руку, второй рукой удерживают хвост и поднимают его так, чтобы визуально можно было контролировать место введения иглы.
  4. Игла вводится на глубину примерно 1 см перпендикулярно нижней поверхности хвоста, по центру.

    Лучше прокол делать на расстоянии 8-12 см от основания хвоста. Можно использовать ориентир «ширина кисти»: от основания хвоста отступить 1,0-1,5 ширины кисти. В этой области хвостовая вена имеет наибольший диаметр (около 0,5-0,8 см) и вероятность попасть в нее максимальна.

Молочные вены определяются как тяжи на нижнебоковой поверхности живота с двух сторон, идущие от вымени вперед. Они очень хорошо видны и доступны, что создает псевдо-эффект банальности процедуры. На самом деле при проколе молочных вен самая главная проблема – безопасность! Во-первых, действия происходят вблизи тазовых конечностей.

Во-вторых, кожа, покрывающая сосуд, достаточно толстая, поэтому необходимо точно рассчитать силу удара при проколе. Автор получал травмы рук при таком взятии крови у коровы.

Взятие крови у свиней

Лучшее место для процедуры – сосуды ушных раковин, кончик хвоста, глазной синус, передняя полая вена.

Многие специалисты отсекают кончик хвоста, что ведет к гемолизу. При этом стерильность пробы оставляет желать лучшего. Картина ухудшается кровотечением и возникающим каннибализмом.

Эффективнее брать материал из передней полой вены, но для этого нужен определенный опыт. К тому же, такой способ является трудоемким.

Удобнее материал брать из глазного синуса. Стратегия взятия биопробы:

  • Фиксируют свинью за верхнюю челюсть с помощью петли. Поросят допускается фиксировать в спинном положении, дополнительно ограничить подвижность головы рукой.
  • Кровь берется при помощи вакуумного шприца. Допускается использовать обыкновенную иглу и пробирку.
  • Иглу вводится во внутренний угол глаза под третье веко, скосом к кости (не к глазному яблоку!). При этом манипулируют канюлей так, чтобы оттеснить глазное яблоко иглой (условно ориентируясь острием на противоположный локтевой бугор).

С опытом легко определяется необходимая глубина введения иглы: 2-3 см – у взрослых свиней, 0,5-1,0 см – у поросят. Начинающим ветврачам можно иглу вводить до ощущения упора в кость.

  • Если все сделано правильно, то при отводе иглы от кости кровь должна начать течь сама. Как правило, на пробирка объемом 20 мл наполняется за полторы минуты (быстрее при визге животного).
  • Капающая кровь из места прокола убираются тампоном.

Тип крови

Перед процедурой надо знать, какая кровь нужна для исследования: стабилизированная («несвернутая») или нестабилизированная (свернутая).

Стабилизированную кровь предохраняют от свертывания, добавляя в нее антикоагулянт. Такая кровь, как правило, используется для общего клинического анализа (определения количества эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов, гемоглобина, гематокрита, СОЭ, цветового показателя).

Применяемые на практике антикоагулянты представлены различными солями и биологическими веществами:

  • калия или натрия оксалаты;
  • натрий лимоннокислый;
  • трилон Б;
  • гепарин. Запрещен при ПЦР-диагностике.

Чтобы стабилизировать кровь у пернатого, удваивается доза антикоагулянта.

Источник: https://nettoplast.ru/blog/polezno-znat/vzyat-krovi-korov-sviney/

Дача
Добавить комментарий

;-) :| :x :twisted: :smile: :shock: :sad: :roll: :razz: :oops: :o :mrgreen: :lol: :idea: :grin: :evil: :cry: :cool: :arrow: :???: :?: :!: